過氧化物酶(POD)活性檢測試劑盒(可見分光光度法)
過氧化物酶(POD)活性檢測試劑盒(可見分光光度法)
注意:正式測定前務必取 2-3 個預期差異較大的樣本做預測定。
產品貨號:
BA1105
產品規格:
50
管
/48
樣
產品簡介:
POD
(
EC 1。11。1。7
)廣泛存在於動物、植物、微生物和培養細胞中,可催化過氧化氫氧化酚類和胺類化合物,具有消除過氧化氫和酚類、胺類毒性的雙重作用。
POD
催化
H
2
O
2
氧化特定底物,在
470nm
有特徵光吸收。
產品內容:
提取液:液體
60mL×1
瓶,
4℃
儲存;
試劑一:液體
60mL×1
瓶,
4℃
儲存;
試劑二:液體
0。33mL×2
瓶,
4℃
儲存;用時每瓶加入
5mL
試劑一;用不完的試劑
4℃
儲存一週;
試劑三:液體
10mL×1
瓶,
4℃
儲存。
需自備的儀器和用品:
可見分光光度計、臺式離心機、可調式移液器、
1mL
玻璃比色皿、研缽、冰和蒸餾水。
操作步驟:
一、粗酶液提取:
1
、 細菌、細胞或組織樣品的製備:
細菌或培養細胞:先收集細菌或細胞到離心管內,離心後棄上清;按照細菌或細胞數量(
10
4
個):提取液體積(
mL
)為
500~1000
:
1
的比例(建議
500
萬細菌或細胞加入
1mL
提取液),超聲波破碎細菌或細胞(冰浴,功率
20
%或
200W
,超聲
3s
,間隔
10s
,重複
30
次);
8000g 4℃
離心
10min
, 取上清,置冰上待測。
組織:按照組織質量(
g
):提取液體積
(mL)
為
1
:
5~10
的比例(建議稱取約
0。1g
組織,加入
1mL
提取液),進行冰浴勻漿。
8000g 4℃
離心
10min
,取上清,置冰上待測。
2
、 血清(漿)樣品:直接檢測。
二、測定步驟:
1
、分光光度計預熱
30min
以上,調節波長至
470nm
,蒸餾水調零。
2
、測定前將試劑一、二和三
37℃
(哺乳動物)或
25℃
(其它物種)放置
10min
。
3
、樣本測定表
在
1mL
玻璃比色皿中按順序加入上述試劑,立即混勻並計時,記錄
470nm
下
30s
時的吸光值
A1
和
1min30s
後的吸光值
A2
。計算
ΔA
=
A2-A1
。
三、POD 活性計算:
1
、血清(漿)
POD
活性
單位定義:每
mL
血清(漿)在每
mL
反應體系中每分鐘
A470
變化
0。01
為一個酶活力單位。
計算公式:
POD
(
U/mL
)
=ΔA×V
反總
÷V
樣
÷0。01÷T =7133×ΔA
2
、組織、細菌或細胞
POD
活性
(1)
按樣本蛋白濃度計算
單位定義:每
mg
組織蛋白在每
mL
反應體系中每分鐘
A470
變化
0。01
為一個酶活力單位。
POD
(
U/mg prot
)=
ΔA×V
反總
÷
(
V
樣
×Cpr
)
÷0。01÷T =7133×ΔA÷Cpr
(2)
按樣本鮮重計算
單位定義:每
g
組織在每
mL
反應體系中每分鐘
A470
變化
0。01
為一個酶活力單位。
POD
(
U/g
鮮重)=
ΔA×V
反總
÷(W×V
樣
÷V
樣總
)÷0。01÷T =7133×ΔA÷W
(3)
按細菌或細胞數量計算
單位定義:每
1
萬個細菌或細胞在每
mL
反應體系中每分鐘
A470
變化
0。01
為一個酶
活力單位。
POD
(
U/10
4
cell
)=
ΔA×V
反總
÷(500×V
樣
÷V
樣總
)÷0。01÷T =14。27×ΔA
V
反總:反應體系總體積,
1。07mL
;
V
樣:加入樣本體積,
0。015mL
;
V
樣總:加入提取液體積,
1mL
;
T
:反應時間,
1min
;
Cpr
:樣本蛋白質濃度,
mg/mL
;
W
:樣本鮮重,
g
;
500
:細菌或細胞總數,
500
萬。
注意事項:
1
、若一次性測定樣本較多,可將試劑一、二、三和蒸餾水按比例配成混合液,在
37℃
(哺乳動物)或
25℃
(其它物種)放置
10min
以上,測定時加入
15L
樣本和
1055L
混合液測定。
2
、如果
ΔA
小於
0。005
,可將反應時間延長到
5min
。如果
ΔA
大於
0。5
,可將樣本用提取液稀釋後測定,計算公式中乘以相應稀釋倍數。
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